+7-495-781-17-87

Звоните пн-пт с 9:00 до 18:00

Культивирование клеток Capricorn scientific

Capricorn Scientific (Германия) – производитель питательных сред, сывороток и других реагентов для культуральных работ. Девиз компании: «Новый стандарт в культивировании клеток» На сегодняшний день в портфолио компании входит более 80 продуктов для культуральных работ, которые поставляются в более чем 40 стран мира. Ключевым преимуществом продукции компании Capricorn Scientific являются высокие стандарты качества по доступной цене.
Проснувшись однажды утром после беспокойного сна, Грегор Замза обнаружил, что он у себя в постели превратился в страшное насекомое.
Проснувшись однажды утром после беспокойного сна, Грегор Замза обнаружил, что он у себя в постели превратился в страшное насекомое.

Оптика
ЛазерыРазделены в пространстве
405 нм, 40 мВт
488 нм, 30 мВт
640 нм, 20 мВт
Каналы детекции«FSC: 488/10 нм
SSC: 488/10 нм
V1: 450/50 нм
V2: 525/50 нм
B1: 525/50 нм
B2: 585/40 нм
B3: 655–730 нм
B4: 750 нм LP
R1: 655–730 нм
R2: 750 нм LP»
Чувствительность и разрешение флуоресценцииMESFs (CV <5%):
FITC <200
PE <100
APC <150
Размеры проточной ячейки200×250 мкм
Детекторы флуоресценцииФЭУ с оптимизированным спектром для каждого канала детекции
Флюидика
Минимальный объем отбираемой пробы [1]1 мкл (25 мкл для волюметрических экспериментов)
Объемная скорость потока образца25, 50 или 100 мкл/мин на выбор или автоподстройка под заданную скорость сбора данных (500, 1000 или 2000 соб./с)
Скорость сбора данных [2,3]<25 мин на 96-луночный планшет (пробы по 5 мкл с лунки)
Объём отбираемой пробы1–450 мкл
Максимальная скорость сбора данныхДо 15,000 событий в секунду
Технические характеристики
Занимаемая площадь385,5×284,5 мм
Габариты (ширина×глубина)
Высота (зависит от положения монитора)
669×400 мм
394–553,5 мм
Габариты в комплекте с модулем miniSampler Plus (ширина×глубина)669×500 мм
Вес50 кг
МониторЖК сенсорный экран 15.6″
Требование к сети питания100–240 В, 50/60 Гц
Потребляемая мощность при стандартном использовании450 Вт
Оперативная память8 Гб DDR4 (SO-DIMM)
НакопительSSD на 500 ГБ
Разъемы4× USB 2.0, 6× USB 3.0 (2 на корпусе дисплея),
2× DisplayPort, 2× LAN, DVI, RE-232, аудио
Уровень шума<61 дБ (A)
Производительность
Кросс-контаминация между образцами [2,4]0,01%
Анализ флуоресценцииДиапазон сигнала — 5 порядков, отображается в линейной, логарифмической и полулогарифмической (hlog) шкалах
Обработка данных
Операционная системаВстроенная, собственной разработки
Измеряемые параметры сигналаПлощадь, ширина и высота сигнала для всех каналов детекции, время и объем образца
Оцифровка сигналаДинамический диапазон >18 бит, оцифровка сигнала с плавающей запятой — 32 бит
КомпенсацияАвтоматическая или ручная (матрица 14×14), во время или после сбора данных
Формат файлов с данными.mqd (внутренний формат), .fcs (совместим с версиями 2.0, 3.0, 3.1)

[1] При каждом взятии пробы отбирается дополнительный объем, который зависит от калибровки и настроек эксперимента и не превышает 10 мкл в режимах Fast, Standard и Extended и 20 мкл в режиме Screen.
[2] Указанна усредненная величина параметра. Может варьировать в зависимости от условий эксперимента.

[3] Скорость сбора данных определена между движением манипулятора к первой лунке и движением из последней лунки. Измерение проведено на высокой скорости потока в режиме fast.

[4] Для измерения кросс-контаминации 96-луночные планшеты с 200 мкл суспензии мононуклеарных клеток периферической крови (PBMC) в концентрации 10 000 кл./мкл в лунках, обозначенных как SRC-wells. Прочие лунки (CO-wells) были заполнены одинаковым количеством рабочего раствора MACSQuant®. Измерения проводились на средней скорости потока в пробах объемом 100 мкл. Кросс-контаминация вычислялась отношение суммарного счета синглетов в CO-wells к суммарному счету синглетов в SRC-wells.и

Брошюры и постерыFlow cytometry solutions — Discover MACSQuant® Instruments
Научные постерыSpatial information on receptor clustering in flow cytometry using FRET. von Kolontaj, K. et al. SLAS (2020)
GMP-compliant flow cytometric cell sorting of antigen-specific T cells using MACS® GMP CD8-APC and MACS GMP CD137-PE Fluorescent Antibodies on the MACSQuant® Tyto® Cell Sorter. Dose et al. CYTO (2019).
A novel user-independent CFU assay for hematopoietic stem and progenitor cells. Bissels, U. et al. (2019) 7th Annual GSCN Conference
Sensitive monitoring of CAR+ T cells in peripheral blood by flow cytometry and real-time qPCR. Biedermann et al. CIMT (2019).
Standardization of whole blood immunophenotyping using an automated staining protocol and recombinant antibodies — CYTO 2018
Method validation of a flow cytometry assay for sensitive detection of CD20 CAR+ T cells in peripheral blood
Standardized and flexible eight-color flow cytometry panels harmonizedbetween different laboratories to study human NK cell phenotype and function
Публикации клиентов Miltenyi BiotecMeasurement assurance and harmonization using the MACSQuant® Analyzer in cell counting applications
No-lyse whole blood Analysis- Simplify flow cytometric analyses with the MACSQuant® Analyzer
Comprehensive flow cytometry Analysis of isolated NK cells from whole blood, Temme, A. et al. (2019).
Automated isolation of CD56+ natural killer cells and antibody-dependent cellular cytotoxicity.
PSC-derived cardiomyocyte subtypes
FRET Express Mode
Characterization of microvesicles usingthe MACSQuant® Analyzer
Antibody panel building guide
Generation of functional CAR T cellsfrom CD4+ and CD8+ T cells
Sorting and cultivation of adult neural stem cells from mice
In Vitro MicroFlow® Kits and MACSQuant® Analyzer 10: High-throughput genotoxicity assays
Characterization using the MACSQuant Analyzer 10 — Analysis of NKT cell endogenous ligands. Kain, L. et al. (2018)
Detection, enrichment, and direct phenotypic and functional characterization of antigen-specific naive and memory T cell subsets. Bacher, P. & Scheffold, A. (2015)
How to use a MACSQuant® Instrument Express Mode in Custom Login
Magnetic enrichment of antigen-specific CD4+ T cells using the MACSQuant® Analyzer 10 enables the in-depth characterization of vaccine-induced circulating follicular T helper cells. Bergmann-Leitner, E. et al. (2016)
Comparison between antibodies from different providers: determination of median fluorescent intensities and stain indices. Reynvoet et al. (2012) MACS&more 14(1).
Determination of intracellular antibody production, cell density, and viability of recombinant CHO-DG44 cells using the MACSQuant Analyzer. Pluschke et al. (2012) MACS&more 14(1).
Identification of different Plasmodium falciparum life cycle stages in human red blood cells using the MACSQuant Analyzer. Muralidharan (2012) MACS&more 14(1).
MACSxpress® Technology allows isolation of B cells with high purity for sensitive and concordant microarray-based gene expression profiling. Mekes et al. (2013) MACS&more 15(1).
High-sensitivity detection and analysis of rare cells by integrated magnetic enrichment and flow cytometry using the MACSQuant® Analyzer. Koehler et al. (2012) MACS&more 14(1)
Modulation of allergic airway inflammation by the histamine H4 receptor: analysis by flow cytometry. Hartwig et al. (2012) MACS&more 14(1).
Identification and enumeration of melanoma-specific tumor-infiltrating lymphocytes and cancer stem cells. Hardt et al. (2012) MACS&more 14(1).
Efficient and rapid in vitro generation of fully functional multi-virus-specific CD4+ and CD8+ T cells. Foerster-Marniok et al. (2013) MACS&more 15(1).
Magnetic enrichment of antigen-specific CD4+ T cells enables the in-depth characterization of vaccine-induce dcirculating follicular T helper cells. Bergmann-Leitner, E. et al. (2016)
MACSPlex Analysis of plasma-derived extracellular vesicles
Determination of ploidy levels in plant cells — Applications for the MACSQuant® Analyzer
Applications for the enrichment column of the MACSQuant® Analyzer: Enumeration of circulating endothelial cells
High-throughput genotoxicity assays
Characterization of exosome populations using the MACSQuant® Analyzer
MACSQuant® Flow Cytometers: MACSPlex Filter Plate calibration
Automated compensation
Reliable, hands-free, and high-throughput cell viability assays on the MACSQuant® Flow Cytometer
A simple no-wash method for the flow cytometric enumeration of leukocyte subsets in whole blood. Windsor, M. (2012) MACS&more 14(1).
Специальные протоколыBlood donor eligibility test for IFN-gamma secreting cell enrichment
Дополнительные материалыMACSQuant Instrument short instructions: Start up
MACSQuant Instrument short instructions: Instrument settings
MACSQuant Instrument short instructions: Icon menu
MACSQuant Instrument short instructions: Calibration
MACSQuant Instrument short instructions: Autolabeling and multisampling
MACSQuant Instrument short instructions: Acquisition
MACSQuant Instrument short instructions: File management
MACS Marker Screen performance data
MACSQuant Analyzer 10 specification sheet

Поддержка

Поддержка в реальном времени (MACSQuant Live Support) с участием экспертов компании-производителя

Техническая поддержка и обучение дизайну эксперимента, настраиванию автоматизации и использованию автонастроек "в поле"

Наши специалисты проводят тренинги на базе вашей лаборатории для обучения ваших специалистов работе на оборудовании

Совместимость с протоколом 21 CFR Part 11 для предоставления данных регулирующим организациям

Исчерпывающая сервисная поддержка по всей России

Сопутствующие товары

Охлаждающие
штативы

Охлаждающие штативы являются важным инструментом для процедур, где требуется охлаждение образцов.

MACS MiniSampler Plus

The MACS® MiniSampler Plus был разработан для автоматизированной обработки нескольких образцов в различных условиях.

MACSQuant® буферная станция

The MACSQuant Buffer Supply Systems позволяет использовать контейнер для жидкости емкостью 20 л.

MACSQuant® колонки

Специально разработанные колонки для использования с MACS® Cell Enrichment Unit.

Проточный цитометр MACSQuant® Analyzer 10

Артикул № 130-096-343. Только для научных исследований. 

Все результаты поиска

Заявка

На уточнение стоимости товара

Заявка

На бесплатное тестирование товара

×